免疫親和柱的原理：
本實驗測定的基礎是抗原抗體間的特異性反應。單克隆抗體被偶聯(lián)在柱內凝膠上，樣品中的經過提取、過濾、稀釋；然后將樣品提取液通過鍵合有抗體的親和柱。
此時，鍵合在親和柱中的抗體上。之后用蒸餾水將親合柱上的雜質除去。用甲醇洗脫親和柱，將從抗體上分離下來。將過濾的甲醇溶液注入熒光計或HPLC進行測定。
特點：
1、采用定向偶聯(lián)技術，抗體載量大，有效柱容量高。所有親和柱產品柱容量均滿足國標對于商品化柱容量的要求；
2、凝膠粒徑均勻，過柱自然流速即可，不需額外加壓；
3、采用抗體定向偶聯(lián)技術，樣本回收率高；
4、操作簡便，可洗脫后直接進樣，無需氮吹。
免疫親和柱的使用要點：
1、上柱的樣品溶液應該保持酸堿中性、無懸浮物、甲醇濃度不宜過高；
2、若樣品為復雜樣品，例如高蛋白、高油脂、酸性樣品，可以將提取液分兩次提取樣品，可以提高提取效果；
3、樣品過柱及甲醇洗脫速度要慢且均勻，約每秒1-2滴；
4、抗原抗體發(fā)生反應的最佳溫度是在25℃左右，實驗需要的環(huán)境溫度最好是室溫24℃-28℃，太高或太低的溫度都會對回收率有一定的影響。在使用前需要恢復至室溫再進行實驗；
5、不要在無水狀態(tài)下，瓊脂容易干燥萎縮，影響質量；
6、儲存條件為4℃-8℃。切記0℃以下的低溫，因為緩沖液凍結，會嚴重影響親和柱內的物理結構，對質量影響很大；
7、洗脫一般選擇試劑甲醇，為增強洗脫效果可加大甲醇體積；
8、樣液免疫凈化后，洗脫液過0.45um或更小孔徑濾膜效果更好。
